Exame Parasitológico de Fezes (EPF): comparação dos métodos e técnicas | Curso de

Aula sobre Exame Parasitológico de Fezes (EPF): comparação dos métodos e técnicas | Curso de #Parasitologia Humana Básica e Clínica - IBAP Cursos – Prof. Dr. Victor Proença
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Conteúdo
0:00 Exame parasitológico de fezes
3:16 Conservantes
5:12 Procedimentos e cuidados de coleta das amostras de fezes
12:47 Coleta de amostras múltiplas
14:41 Exame microscópico de fezes - Métodos Qualitativos
24:22 Método de Willis
26:07 Método de Faust
30:06 Método de Kato-Katz
33:53 Escolha do Método

• Coleta de Amostras Frescas
• Não requer jejum, nem restrição de alimentação
• Coletar na consistência que estiver (mesmo com diarreia)
• Consistência  aquosas, liquefeitas, pastosas, amolecidas, firmes, consistentes, petrificadas
• Defecar em vasilhame limpo e seco  penico, comadre ou plástico
• Retirar frações de fezes em diferentes partes do bolo fecal (início, meio e fim)
• Colocar em frasco coletor universal (sem líquido conservante)
• Complete até metade do frasco (50-100g)
• Se houver muco (catarro), pus ou sangue  colher esta porção e informar a presença
• Se visualizar parasita  coletar e informar ao atendente
• Identificar o frasco com nome completo
• Encaminhar imediatamente ao laboratório
• Pode armazenar na geladeira por até 12 horas
• Coleta de Amostras Múltiplas
• Conservantes
• Formalina
• MIF: mercurocromo, iodo e formol
• SAF: acetato de sódio, ácido acético e formol → conservar cistos e trofozoítos
• Métodos de Concentração
• Sedimentação espontânea: Hoffman, Pons e Janer; Lutz
• Sedimentação por centrifugação: Blagg; MIFC; Ritchie
• Flutuação espontânea: Willis
• Centrifugoflutuação: Faust
• Concentração por hidrotropismo e termotropismo: Baermann-Moraes; Rugai
• Concentração por passagem em tela: Kato
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Prof. Dr. Victor Proença
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